Бібліометричний аналіз хвороб м’язів, які викликані алкоголем, на основі CiteSpace
DOI:
https://doi.org/10.29038/2617-4723-2020-390-2-72-82Keywords:
Citespace, алкогольна міопатія, атлас візуалізації, АФК, автофагія, антиоксиданти, Hotspot of ScienceAbstract
Міопатія скелетних м’язів, викликана надмірним зловживанням етанолом, складає половину або дві третини патологій м’язів, які виникають унаслідок зловживання алкоголем. Можна визначити алкогольні порушення скелетних м’язів як гострі, так і хронічні. Вживання середніх доз
алкоголю має позитивний або захисний ефекти (наприклад, на серцево-судинну систему), але тривале пияцтво та гостра алкогольна інтоксикація можуть негативно вплинути на різноманітні системи органів і потенційно збільшити смертність. Тому потрібно детально зрозуміти стан вивчення алкогольної міопатії.
Для цього були опрацьовані в основних архівах Web of Science (WOS) наукові статті про алкогольну міопатію з 2000 по 2020 рік; були використані бази даних CiteSpace та WOS для статистики цитування літератури, для оцінки кількості написаних статей, дослідницьких організацій, цитування літератури та ідентифікації ключових слів. Загалом після аналізу було зібрано 947 публікацій, і кількість опублікованих статей зростала з року в рік. Середня кількість випущених публікацій – 47,355 на рік. Більшість документів опубліковано загалом 7 країнами. Серед них США опублікували 397 статей, які посіли перше місце серед усіх країн. Її проміжна центральність також є найбільшою, що свідчить про те, що інші країни мають більше визнання за його науковими висновками. Статті, опубліковані Еморі Унівом та Кобе Унівом, добре знані в цій галузі, серед 7 найкращих академічних установ з обсягами публікацій. Є 28 основних авторів та загалом 263 написаних статті. Статті з високим цитуванням класифікують на 40 категорій, з них 11 – чітко класифіковані категорії. Дослідження спільних ключових слів виявляє, що такі ключові слова, як скелетні м’язи, окислювальний стрес, етанол, алкоголь тощо дуже поширені. А отже, література про алкогольну міопатію зосереджена насамперед у західних країнах, а аутофагія, АФК та антиоксиданти є останніми актуальними темами дослідження.
References
2. Preedy, V. R.; Adachi, J.; Peters, T. J.; Worrall, S.; Parkkila, S.; Niemela, O.; Asamo, M.; Ueno, Y.; Takeda, K.; Yamauchi, M.; others. Recent advances in the pathology of alcoholic myopathy. Alcoholism: Clinical and Experimental Research 2001, 25, pp 54–59.
3. Urbano-Marquez, A.; Estruch, R.; Navarro-Lopez, F.; Grau, J. M.; Mont, L.; Rubin, E. The effects of alcoholism on skeletal and cardiac muscle. New England Journal of Medicine 1989, 320 (7), pp 409–415.
4. Simon, L.; Jolley, S. E.; Molina, P. E. Alcoholic myopathy: pathophysiologic mechanisms and clinical implications. Alcohol research: current reviews 2017, 38 (2), p 207.
5. Chen, C. CiteSpace II: Detecting and visualizing emerging trends and transient patterns in scientific literature. Journal of the American Society for information Science and Technology 2006, 57 (3), pp 359–377.
6. Chen, C.; Hu, Z.; Liu, S.; Tseng, H. Emerging trends in regenerative medicine: a scientometric analysis in CiteSpace. Expert opinion on biological therapy 2012,
12 (5), pp 593–608.
7. Zong Shuping. Evaluation of core authors based on Price law and the com prehensive index method: a case study of Chinese Journal of Scientific and Technical Periodicals. Chinese Journal of Scientific and Technical Periodicals 2016, 27 (12), pp 1310–1314.
8. Vinood, B. P.; Simon, W.; Emery, P. W.; Preedy, V. R. Protein adduct species in muscle and liver of rats following acute ethanol administration. Alcohol & Alcoholism 2005, 40 (6), 485.
9. Freeman, T. L.; Tuma, D. J.; Thiele, G. M.; Klassen, L. W.; Worrall, S.; Onni Niemel; Parkkila, S.; Emery, P. W.; Preedy, V. R. Recent Advances in Alcohol-Induced Adduct Formation Alcoholism: Clinical and Experimental Research 2005, 29 (7), pp 1310–16.
10. Preedy, V. R.; Adachi, J.; Ueno, Y.; Ahmed, S.; Mantle, D.; Mullatti, N.; Rajendram, R.; Peters, T. J. Alcoholic skeletal muscle myopathy: definitions, features, contribution of neuropathy, impact and diagnosis. European Journal of Neurology 2001, 8 (6).
11. Preedy, V. R.; Ohlendieck, K.; Adachi, J.; Koll, M.; Sneddon, A.; Hunter, R.; Rajendram, R.; Mantle, D.; Peters, T. J. The importance of alcohol-induced muscle
disease. Journal of Muscle Research & Cell Motility 2003, 24 (1), pp 55–63.
12. Zhou, S.; Bailey, M. J.; Dunn, M. J.; Preedy, V. R.; Emery, P. W. A quantitative investigation into the losses of proteins at different stages of a two dimensional gel electrophoresis procedure. Proteomics 2005, 5.
13. Steiner, J. L.; Lang, C. H. Dysregulation of skeletal muscle protein metabolism by alcohol. Am J Physiol Endocrinol Metab 2015, 308 (9), p 699.
14. Gordon, B. S.; Williamson, D. L.; Lang, C. H.; Jefferson, L. S.; Kimball, S. R. Nutrient-Induced Stimulation of Protein Synthesis in Mouse Skeletal Muscle Is Limited by the mTORC1 Repressor REDD1. Journal of Nutrition 2015, 145 (4), 708.
15. Lang, C. H.; Frost, R. A.; Bronson, S. K.; Lynch, C. J.; Vary, T. C. Skeletal muscle protein balance in mTOR heterozygous mice in response to inflammation and leucine. American Journal of Physiology: Endocrinology & Metabolism 2010, 61 (6), pp 1283–1294.
16. Frost, R. A.; Lang, C. H. Protein Kinase B / Akt: A Nexus of Growth Factor and Cytokine Signaling in Determining Muscle Mass. Journal of Applied Physiology 2007, 103 (1), pp 378–387.
17. Vary, T. C.; Frost, R. A.; Lang, C. H. Acute alcohol intoxication increases atrogin-1 and MuRF1 mRNA without increasing proteolysis in skeletal muscle. AJP Regulatory Integrative and Comparative Physiology 2008, 294 (6), pp 1777–1789.
18. Eisner, V.; Lenaers, G.; Hajnoczky, G. Mitochondrial fusion is frequent in skeletal muscle and supports excitation–contraction coupling. Journal of Cell Biology 2014, 205 (2), pp 179–195.
19. Picard, M.; Azuelos, I.; Jung, B.; Giordano, C.; Matecki, S.; Hussain, S.; White, K.; Li, T.; Liang, F.; Benedetti, A. Mechanical ventilation triggers abnormal mitochondrial dynamics and morphology in the diaphragm. Journal of Applied Physiology 2015, 118 (9).
20. Kandul, N. P.; Zhang, T.; Hay, B. A.; Guo, M. Selective removal of deletion-bearing mitochondrial DNA in heteroplasmic Drosophila. Nature Communications. 7, 13100 (2016). URL: https://doi.org/10.1038/ncomms13100
21. De Palma, C.; Morisi, F.; Pambianco, S.; Assi, E.; Touvier, T.; Russo, S.; Perrotta, C.; Romanello, V.; Carnio, S.; Cappello, V.; others. Deficient nitric oxide signalling impairs skeletal muscle growth and performance: involvement of mitochondrial dysregulation. Skeletal muscle 2014, 4 (1), p 22.
22. Malik, Z. A.; Kott, K. S.; Poe, A. J.; Kuo, T.; Chen, L.; Ferrara, K. W.; Knowlton, A. A. Cardiac myocyte exosomes: stability, HSP60, and proteomics. AJP: Heart and Circulatory Physiology 2013, 304 (7), pp 954–965.
23. Lang, C. H.; Frost, R. .; Bronson, S. K.; Lynch, C. J.; Vary, T. C. Skeletal muscle protein balance in mTOR heterozygous mice in response to inflammation and leucine. American Journal of Physiology: Endocrinology & Metabolism 2010, 61 (6), pp 1283–1294.
24. Chen Yue; Chen Chaomei; Methodological function of CiteSpace knowledge graph. Studies in Science of Science 2015, 33 (02), pp 242–253.
25. Secretariat of the World Health Organization. Strategies to reduce harmful use of alcohol. Resolution report, 2008.
26. Liu Jian; Liu Lin; Tang Lin; Yang Hui; Han Yuan-shan; Wang Yu-hong. Protective effect of Zuogui Jiangtang Jieyu Formula against damage of hippocampal neuron of NVU induced by mitophagy via mTOR pathway in diabetes mellitus with depression. China Journal of Traditional Chinese Medicine and Pharmacy 2020, 35 (09), pp 4631–4636.
27. Steiner, J.; Lang, C. Dysregulation of skeletal muscle protein metabolism by alcohol. American journal of physiology. Endocrinology and metabolism 2015, 308 (9), pp 699–712.
28. Bertero, E.; Kutschka, I.; Maack, C.; Dudek, J. Cardiolipin remodeling in Barth syndrome and other hereditary cardiomyopathies. Biochimica et biophysica acta-molecular basis of disease 2020, 1866 (8). DOI: 10.1016/j.bbadis.2020.165803.
29. Мотузюк, О. П.; Ноздренко, Д. М.; Богуцька, К. І.; Ременяк, О. В.; Прилуцький, Ю. І. Морфологічні зміни в ішемізованих м’язових волокнах musculus soleus за хронічної алкоголізації тварин та використання водного колоїдного розчину С60-фулеренів. Наносистеми, наноматеріали, нанотехнології 2019, 17 (1), c 207–224.
30. Ноздренко, Д. М.; Зай, С. Ю.; Мотузюк, О. П.; Богуцька, К. І.; Ільченко, О. В.; Прилуцький, Ю. І. Вплив фулеренів С60 на механокінетичні та біохемічні параметри скорочення muscle soleus хронічноалкоголізованих щурів з експериментально індукованою ішемією. Наносистеми, наноматеріали, нанотехнології 2018, 16 (3), c 583–595.
