Антагоністичні взаємодії деяких макроміцетів та Penicillium sp. (Aspergillaceae) в культурі

Марія Пасайлюк; Леся Пліхтяк

doi:10.29038/2617-4723-2022-2-7

Автор(и)

Марія Пасайлюк Національний природний парк "Гуцульщина"
Леся Пліхтяк Косівський фаховий коледж прикладного та декоративного мистецтва

DOI:

https://doi.org/10.29038/2617-4723-2022-2-7

Ключові слова:

конфронтація, культури грибів, макроміцети, мікроміцет, штами

Анотація

Вагомим критерієм при виборі певних штамів грибів для їх промислового культивування є їх бактерицидні та фунгіцидні властивості. Метою роботи було проаналізувати деякі штами грибів на предмет їх здатності протидіяти Penicillium sp. в умовах конфронтації. В результаті проведених досліджень рівнозначні антагоністичні властивості встановлені між мікроміцетом та Polyporus umbellatus 2511, 2510, Sparassis nemecii 2327. Антагоністичні властивості мікроміцета переважають у бінарних композиціях Penicillium sp.− Hericium coralloides 2332, 2333, Penicillium sp. – Flammulina velutipes CU. Видами, які видаються перспективними у плані подальшого їх використання для культивування та/чи дослідження їх фунгіцидних властивостей є Sparassis laminоsa 2211 та Fomitopsis оfficinalis 5004, 2498, 2497, антагоністичні властивості яких переважають при спільному культивуванні із мікроміцетом.

Посилання

Morozov, A.I. Bolshaya gribnaya entsiklopediya. M.: AST; Donetsk: Stalker, 2005; s. 32,33.

Vovk, M. Are the antibiotics added when growing mushrooms? 2020-onward. Available at: https://labprice.ua/statti/chi-dodayut-antibiotiki-pri-viroshhuvanni-gribiv/ (Accessed 27 June 2022).

Bellettinia, M. B.; Fiordaa, F. A.; Maievesa, H. A.; Teixeiraa, G. L.; Avilla, S.; Hornunga, P. S.; Juniorb, A. M.; Ribania, R. H. Factors affecting mushroom Pleurotus spp. Saudi Journal of Biological Sciences. 2019, 26, pp 633–646.

Bisko, N. A.; Lomberg, M. L.; Mytropolska, N. Yu.; Mykchaylova, O. B. 2016. Kolektsiya kultur shapynkovykh hrybiv (IBK) (IBK Mushroom Culture Collection); Alterpress: Kyiv, 2016; s 37, 46.

Pasailiuk, M. V. Ksylotrofni aharykomitsety – antahonisty ridkisnoho hryba Hericium coralloides (Scop.) Pers. (Hericiaceae) v kulturi. Ukrainian Journal of Ecology 2017, 7(3), s 225−233. https://doi. 10.15421/2017_72

Gea, F. J.; Navarro, M. J.; Santos, M.; Diánez, F.; Carrasco, J. Control of Fungal Diseases in Mushroom Crops while Dealing with Fungicide Resistance: A Review. Microorganisms. 2021, 9, 585–608.

Adie, B.; Grogan, H.; Archer, S.; Mills, P. Temporal and spatial dispersal of Cladobotryum conidia in the controlled environment of a mushroom growing room. Applied and Environmental Microbiology. 2006, 72, pp 7212–7217.

Elkhateeb, W. A.; Daba, G. M.; Thomas, P. W.; Wen, T. C. Medicinal mushrooms as a new source of natural therapeutic bioactive compounds. Egyptian Pharmacic Journal. 2019, 18, pp 88–101.

Elkhateeb, W. A.; Daba, G. M.; Elmahdy, E. M.; Thomas, P. W.; Wen, T-C.; Mohamed, N. S. Antiviral potential of mushrooms in the light of their biological active compounds. ARC Journal of Pharmaceutical Sciences (AJPS). 2019, 5(2), pp 45–49.

Kozarski, M.; Klaus, A.; Niksic, M.; Jakovljevic, D.; Helsper, J. P.; Van Griensven, L. J. Antioxidative and immunomodulation activities of polysaccharide extracts of the medicinal mushrooms Agaricus bisporus, Agaricus brasiliensis, Ganoderma lucidum and Phellinus linteus. Food Chemistry. 2011, 129, pp 1667–1675.

Minato, K. I.; Laan, L. C.; van Die, I.; Mizuno, M. Pleurotus citrinopileatus polysaccharide stimulates anti-inflammatory properties during monocyteto-macrophage differentiation. International Journal of Biological Macromoleculs. 2019, 122, pp 705–712.

Ruan, W.; Popovich, D. G. Ganoderma lucidum triterpenoid extract induces apoptosis in human colon carcinoma cells (Caco-2). Biomedicine and Preventive Nutrition. 2012, 2(3), pp 203–209.

Pasailiuk, M.V.; Sukhomlyn, M. M.; Fontana, N. M. Influence of rutin on fruiting of Hericium coralloides, Polyporus umbellatus, and Flammulina velutipes. Mycologia. 2022, 114, pp 467-475.

Girometta, C. Antimicrobial properties of Fomitopsis officinalis in the light of its bioactive metabolites: a review. Mycology, 2019, 10, pp 32–39.

Sukhomlyn, M. M. Skryninh hrybiv-antahonistiv korenevoi hubky. Scientific Bulletin of the National Agrarian University. Forestry 2000, 27, s 296−299.

Keller, C.; Maillard, M.; Keller, J.; Hostettmann, K. Screening of European Fungi for Antibacterial, Antifungal, Larvicidal, Molluscicidal, Antioxidant and Free-Radical Scavenging Activities and Subsequent Isolation of Bioactive Compounds. Pharmaceutical Biology. 2002, 40(7), pp 518−525. https://doi.org.10.1076/phbi.40.7.518.14680

Kimura, T. Natural products and biological activity of the pharmacologically active cauliflower mushroom Sparassis crispa. BioMed Research International. 2013. pp 377−382.

Pasailiuk, M. V. Kultyvuvannia Sparassis laminosa na roslynnykh substratakh. Notatky suchasnoi biolohii 2021, 1(1), s 9–14.

Zhang, G.; Zeng, X.; Li, C.; Li, J.; Huang, Y.; Han, L.; Wei, J. A.; Huang, H. Inhibition of urinary bladder carcinogenesis by aqueous extract of sclerotia of Polyporus umbellatus fries and polyporus polysaccharide. The American Journal of Chinese Medicine. 2011, 39(1), pp 135–144.

Wang, Y.; Bao, L.; Yang, X.; Li, L.; Li, S.; Gao, H.; Yao, X. S.; Wen, H.; Liu, H. W. Bioactive sesquiterpenoids from the solid culture of the edible mushroom Flammulina velutipes growing on cooked rice. Food Chemistry. 2012, 132(3), pp 1346−1353.